1材料与方法
1.1材料
试验所用的材料为长春市园林科学研究所抗寒月季基地抗寒月季新品种。
1.2方法
1．2．1外植体的准备
取生长健壮优良母株上带有腋芽的嫩茎，摘除叶片和嫩刺，用自来水冲洗干净后，用浸有75%的酒精棉球擦拭表面5~10s，剪成3~5cm左右的茎段，在超净工作台上，用0.1%升汞溶液消毒10~12分，无菌水冲洗3~5次，再用无菌滤纸吸干表面水分，切成带有1个或2个腋芽的茎段接种到培养基中。
1．2．2腋芽的分化与增殖
把外植体分别接种于添加6-ba和naa的ms培养基上进行起始培养，诱导腋芽萌发建立无菌快速繁殖无性系，再将无菌小苗剪切成1~2cm左右的小段接种到添加不同6-ba和naa的ms培养基中进行继代增殖培养，培养一定时间后对小苗的增殖与生长情况进行观察统计分析，培养基含30g/l糖、8g/l琼脂、ph值5.8~6.5、培养温度（25+-3），每天光照为11~12小时，光照强度1000~1500lx。
1．2．3生根与移栽
将增殖后长势旺盛、节间绅长适度的无根小苗转接到1/2ms培养基中诱导生根，30天后观察生根情况。
生根后的试管苗在常温下炼苗5~7天，移栽到草碳+珍珠岩（体积比为1∶1）的基质中，待成活后小苗高达10cm左右移到田间种植。
2结果与讨论
2．1腋芽分化
将外植体接种到ms+2.0mg/l6-ba+0.1mg/lnaa的培养基上培养7天后，大部分外植体开始萌动，10天腋芽膨大明显，随后长出嫩芽形成无根芽从。
为选择出不同质量浓度6-ba对诱导腋芽分化的影响，以ms为基本培养基配制7种附加不同质量浓度（分别为0.10.51.01.52.03.04.0）的6-ba与0.1mg/lnaa配组的腋芽诱导培养基,每组培养基接种40个外植体,培养40天观察其腋芽分化情况（见表1）。
表1表明,月季腋芽分化率与培养基中6-ba质量浓度呈抛物线关系,6-ba由0.1增加至3.0时腋芽分化率明显提高,以3.0为最高,腋芽分化率达77.5%;当6-ba的质量继续增加时,其腋芽分化率则明显下降;6-ba质量浓度为0.1时其腋芽分化率最低,仅为7.5%;6-ba质量浓度为5.0时,其腋芽分化率只为15%,可见,培养基中6-ba质量浓度为1.5~3.0时有利于诱导腋芽分化,尤其以2.0~3.0时为最佳。
2.2继代增殖培养
取自同一种培养基上长势、大小一致的继代培养芽和茎段，同时接种到不同质量浓度的6-ba、naa的ms培养基中，培养30天后进行观察并统计结果（见表2）。
由表2可以看出，在naa质量浓度相同而6-ba质量浓度不同的处理中，随着6-ba浓度的升高（1.5~3.0）芽苗的增殖倍数也相应提高，naa为0.05~0.1、6-ba为3.0的处理芽苗增殖倍数高达6.6~6.8倍；可见，培养基中6-ba质量浓度为3.0、naa质量浓度为0.05时为最佳的诱导腋芽分化的处理组合。
2．3生根培养
无菌芽苗在分化与增殖培养基中只诱导地上部分，既不断地分枝增殖，曾多次出现现蕾、开花现象，但均不易生根。因此，将原来培养基中的大量元素减半（既1/2ms），并去除ba进行根的诱导。结果在无菌苗根的诱导过程中，生长素的种类和使用浓度起决定性作用，为此对不同种类的生长素naa、iba、a、iaa的根效应作对比试验，结果表明，naa、iba对抗寒月季无菌苗诱根效应明显优于iaa，但两者之间差异不明显，用iaa进行根的诱导，芽苗基部长出较多的愈伤组织，发根率低，且发根量少，移栽成活率下降，这可能是因为生长过多的愈伤组织影响根系维管束的发育所致，为为了解naa和iba的适宜质量浓度，进行了naa和iba的质量浓度试验，分别设置0.1、0.2、0.3、0.5、0.75、1.0、1.5等7种质量浓度进行比较，培养30天后观察根系生长情况，表3表明，以1/2ms（大量元素用量减半）+naa和1/2ms（大量元素用量减半）+iba培养基对月季根的诱导效果均较为理想，而且浓度都在0.3-0.75mg/l范围内最为适合，但以naa为最佳。其中naa生根率最高达92%，移栽成活率高达89%，iba的生根率也高达90%，移栽成活率达87%。
将小苗接种到上述培养基中10天后其基部伤口基本愈合，18天则长出许多小白根，培养30天发根率均达90%以上，且长有3条以上，长度达2.0cm以上白根的占80%以上。
2．4炼苗移栽
在生根培养基中，无菌苗生长迅速，植株逐渐健壮起来，其根系生长尤为迅速，在多数根系长达1.0cm，其根尖仍保持旺盛生长状态，此时即可进入过度栽培（炼苗）阶段，移栽前先将瓶苗移出恒温培养室，在常温下置于较强散射光中炼苗7天，打开瓶盖后继续炼苗2~7天，然后小心取出放入清水中清洗干净，注意少伤根，移栽到以草碳土+珍珠岩（体积比1∶1）的基质中，浇透水并覆盖塑料膜，保持相对湿度85~90%，温度15~25℃，10天后逐渐揭膜炼苗，15~20天可将塑料膜全部揭除，并浇施营养液补充营养，其成活率一般可达70%以上，待小苗长至10~15cm左右时，就可移植到田间定植。
